20 Hongos según su habitad y reproducción

20 Hongos según su habitad y reproducción

Taphrunomycotina:

Reproducción por gemación

habitad presente en plantas que en donde producen malformaciones.

Pezizomycotina:

Reproducción asexual por conidios y reproducción sexual por anamorfod-teleomorfos.

habitad origina 8 ascosporas en ascas.

Zygomycetes:
Reproducción asexual. por esporangiosporas.

Reproducción sexual por gematangiogamia.

Habitad acuático y terrestre.

Ascomycota:

Reproducción sexual y asexual.

Habitan bajo tierra, estiércol, cuerpos fructíferos.

Saccharomycotina:

Reproducción asexual por gemación de en saccharomyces y reproduccion sexual.

Habitad presentes en el suelo, agua, aire detritos.

Blastocladiomycota:

Reproducción sexual por copulación de de planogamentos

habitad acuático o en el suelo

Chytridiomycota:

reproducción asexual constituida por el esporangio.

habitad acuático fundamentalmente o en el suelo.

Zoupagomycotina:

reproducción asexual con esporas que no son expulsadas de forma activa.

reproducción sexual por zoosporas.

viven en diversos habitad (suelo, materia vegetal en putrefaccion)

Entomophthoramycotina:

reproducción asexual por monosporangios (tambien denominados conidios)

aparecen en zigosporas y esporas de reposo o esporas latentes que permanecen en el organismo parasitado.

Mucoromycotina:

reproducción asexual constituida por el espnrangio.

crecimiento apical, con aparición de vesículas denominadas quitosomas.

Peronosporomycetes:

reproducción sexual generalmente gametología.

su habitad es el suelo.

Oomicetos o mohos:

"hongos huevo", actúan contra animales acuáticos y plantas, vinculadas al medio acuoso, la fase de reproducción sexual por ogamia y por gamentagiogamla.

Macromicetos:

"hongos grandes" reproducción a través de esporas, su habitad debe ser de 10°C a 25°C y ambientes húmedos.

Chytridiomycota:

viven en el agua, poseen esporas natatorias, necesitan el agua para dispersarse, viven en el suelo y en el agua reproducción por esporas.

Deutoromicetos:

pertenecen al grupo de ascomicetos, producen ascoesporasendogenas, se reproducen asexualmente viven a sus tratos.

Ascomicetos:

viven en numerosos sustratos, incluso bajo la tierra como el caso de las frutas, abarcan unas 30,000 especies, en la reproducción sexual, entre la plasmoganica y la cariogamia, hay una fase dicariotica en la que los núcleos se encuentran apareados, pero no fusionados, se usan para la fermentación de pan, vino, cerveza y otros comestibles.

Basidomicetos:

tienen núcleo diacrítico, reproducción asexual, se produce mediante esporas conocidas como canidios u ordios, son descomponedores son cultivados para obtener, setas comestibles o bien recolectados en el campo.

Pseudohongos:

Reproducción asexual por zoosporas.

su habitad acuático y suelo.

·          

La bacteria Escherichia coli también conocida por la abreviación de su nombre, E. coli, es quizás el organismo procariota más estudiado por el ser humano. Se trata de una enterobacteria que se encuentra generalmente en los intestinos animales, y por ende en las aguas negras, pero se lo puede encontrar en multitud de ambientes, dado que es un organismo ubicuo. Fue descrita por primera vez en 1885 por Theodore von Escherich, bacteriólogo alemán, quien la denominó Bacterium coli. Posteriormente la taxonomía le adjudicó el nombre deEscherichia coli, en honor a su descubridor.

Pero ahora ha evolucionado y debes detenerla antes de que infecte a todo el mundo y mueran. D:


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Practica Halos

Practica. halos-de-inhibicion from Alexis Quiroz Frausto

NUMERO MAS PROBABLE (NMP)

ENUMERACION BACTERIANA: EL NUMERO MAS

PROBABLE

EL METODO DE NUMERO MAS PROBABLE (NMP) es una estrategia efeciente de estimación de densidades poblacionales especialmente cuando una evaluación cuantitativa de células individuales no es factible. La técnica se basa en la determinación de presencia o ausencia (pos o neg) en réplicas de diluciones consecutivas de atributos particulares de microorganismos presentes en muestras de suelo u otros ambientes. Por lo tanto, un requisito importante de este método es la necesidad de poder reconocer un atributo particular de la población(es) en el medio de crecimiento a utilizarse. El estimado de densidad poblacional se obtiene del patrón de ocurrencia de ese atributo en diluciones seriadas y el uso de una tabla probabililística.

Algunas de las ventajas del NMP son: (i) la capacidad de estimar tamaños poblacionales basados en atributos relacionados a un proceso (selectividad); por ejemplo se puede determinar la densidad poblacional de organismos que pueden nodular leguminosas en una muestra de suelo usando el método de infección de plantas, (II) provee una recuperación uniforme de las poblaciones microbianas de suelos diversificados, (III) determina sólo organismos vivos y activos metabólicamente, y (iv) suele ser más rápido e igual de confiable que los métodos tradicionales de esparcimiento en platos de cultivo, entre otros.

En este ejercicio, se utilizará una variante de esta metodología para estimar la densidad total de bacterias presentes en una muestra. El atributo particular a utilizarse será la capacidad de microorganismos a formar colonias en medios sólidos de crecimiento.

Materiales & Equipos:

• Muestras ambientales (lodos activados, ríos, charcas, suelo, etc.)

• Placas Petri con medio de crecimiento (R2A, LB, TSA u otro)

• Tubos de dilución con 9 ml de 0.85% NaCl

• Micropipetas de 20 µl

• Puntas para micropipeta

• Incubadora a 25°C

• Vortex

METODOLOGIA

1. Muestras: Colecte asépticamente muestras frescas de suelo (10 g) de varios lugares u obtenga muestras de agua (10 ml) de lagos, ríos o charcas.

2. Extracción de microorganismos viables: Para muestras de suelo, las células podrán ser removidas y homgenizadas añadiendo 1 g de muestra a un tubo de ensayo que contenga 9 ml de solución salina. Agite moderadamente por 5 minutos en un vortex.

3. Diluciones en serie: El extracto de suelo puede ser diluido seriadamente transfiriendo 1 ml a un tubo con 9 ml de 0.85% NaCl. Cada transferencia corresponde a una dilución de 1 en 10. Repita en serie el procedimiento de dilución hasta alcanzar la dilución 10-7. Para muestras líquidas, mezcle bien la muestra y proceda a preparar las diluciones seriadas como fueron descritas anteriormente.

4. Placas Petri: Utilizando un marcador, divida la placa petri en cinco zonas de igual tamaño. Use una placa por cada muestra. Rotule cada zona con el factor de dilución a ser inoculado

5. Inoculación: Transfiera 5 µl de la dilución apropiada al área correspondiente. Repita esta operación cinco veces por cada dilución:

6. Permita que el incóculo seque sobre el medio de crecimiento. Selle la placa con un tirillade parafina. Invierta la placa e incube a 25°C por 7 días. 7. Evaluación de crecimiento: Para cada dilución en asendencia evalue el crecimiento o no crecimiento sobre cada réplica incoculada. Reporte los resultados como se indican en el ejemplo a continuación:

Datos & Análisis:

Utilizando los valores ofrecidos en la tabla 1, determine la población estimada para su muestra (ej., 5-5-3-2-0: 1,383). De su patrón de respuestas no estar en la tabla, promedie el valor estimado del patrón superior e inferior presente en la tabla 1 (ej., 5-4-1-1-0 no está en la tabla, entonces promedie 5-4-1-0-0 (169) y 5-4-2-0-0 (216) como el resultado más apropiado: 5-4-1-1-0 = (169+216)/2 = 193). Este valor obtenido es el NMP sin ajustar. Para calcular la densidad poblacional de la muestra, entonces tendrá que multiplicar el NMP sin ajustar por el factor de correción de volumen (ver nota Tabla 1) por el recíproco del factor de dilución menor inoculado en la placa (ej., 5-5-3-2-0: 1,383 X 200 X 1000 = 2.78 x 108 células/g de suelo)

Esta es la densidad poblacional estimada asumiendo 1 ml de inóculo. Este valor debe ser ajustado por el factor de dilución y el volumen de inóculo (por ejemplo, si usted inoculó en cada placa un volumen de 10 µl, entonces el valor de la tabla debe ser correjido multiplicándolo por 100 [10 X 100 = 1,000 µl ó 1 ml]).

PATRONES DE CRECIMIENTO EN AGAR INCLINADO

PATRONES DE CRECIMIENTO EN AGAR INCLINADO:

Agar nutritivo inclinado:

Los cultivos en este medio se inoculan en una sola línea recta (sobre la superficie del bisel), y se evalúan de la siguiente manera:

Abundancia de crecimiento: La cantidad de crecimiento es designada como ninguna, leve, moderada o abundante.

Pigmentación: Lo microorganismos cromogenicos, pueden producir pigmentos intracelulares que son responsables de la coloración de las colonias; otros microorganismos, producen pigmentos saludables extracelulares que son excretados en el medio y también producen color, sin embargo la mayoría de los microorganismos son no cromogenicos y aparecerán en tonalidades que van desde el blanco al gris.

Las características ópticas: Pueden evaluarse con base en la cantidad de luz trasmitida a través del crecimiento, estas características son descritas como; opaca (ninguna trasmisión de luz), traslucida (trasmisión parcial) o trasparente (trasmisión total de la luz).

Forma: La apariencia del crecimiento de la siembra en una sola línea sobre la superficie del agar inclinado se designa de la siguiente forma;

a. Filiforme.-Crecimiento en forma de hilo con bordes lisos continuos.

b. Equinulado.-Crecimiento en forma de hilo con bordes irregulares continuos.

c. Barbado.-Colonias semi-confluentes o no confluentes.

d. Difuso.-Crecimiento difuso y reducido.

e. Arborescente.- Crecimiento en forma de árbol.

f. Rizoide.- Crecimiento en forma de raíz.

Caldo Nutritivo:

Son evaluados según la distribución y apariencia del crecimiento.

a. Turbidez fina uniforme.-Crecimiento fino y totalmente disperso

b. Floculante.- Crecimiento en agregados es camosos totalmente dispersos

c. Película.-Crecimiento en la superficie como plataforma, grueso

d. Sedimento.-Concentración del crecimiento en el fondo del caldo; puede ser granular, escamoso o floculante.

Agar Nutritivo:

La descripción se realiza sobre las colonias formadas (agrupamiento bacteriano originado por el crecimiento y observable macroscópicamente), de forma aislada y se evalúa de la siguiente manera;

a. Tamaño: Grande (diámetro mayor a 1mm), mediano (diámetro aproximado a 1 mm), pequeño (diámetro inferior a 1 mm) y puntiforme.

b. Forma: Puntiforme, circular, filamentosa, irregular, rizoide y lanceolada.

c. Borde: De borde regular (continuo), de borde irregular (ondulado, lobulado, espinoso/dentado/lacerado, ondulado y filamentoso).

d. Elevación: Plana o aplastada (no elevación), elevada (convexa baja,convexa cupuliforme, mamelonada, pulvinada y umbilicada).

e. Superficie: Lisa o rugosa.

f. Consistencia: Blanda, dura o mucoide.

g. Aspecto: Brillante, opaco y mate o translucido.

h. Pigmento: De diferente color. Pueden ser pigmentos solubles en agua yque decoloran el medio, pigmentos fluorescentes y pigmentos nodifundibles confinados a las colonias.

MEDIOS DE CULTIVO MÁS UTILIZADOS EN EL LABORATORIO

MEDIOS DE CULTIVO MÁS UTILIZADOS EN EL LABORATORIO:

Nutritivo:

Categoría; Medios ricos y enriquecidos. No diferencial.

Uso:

Medio de cultivo utilizado para propósitos generales, para el aislamiento y recuento de microorganismos con escasos requerimientos nutricionales. Su uso está descripto en procedimientos para el análisis de alimentos, aguas y otros materiales de importancia sanitaria.

Fundamento:

 Medio de cultivo nutritivo no selectivo, en el cual la pluripeptona y el extracto de carne constituyen la fuente de carbono, nitrógeno y aportan nutrientes para el desarrollo bacteriano. El agregado de cloruro de sodio mantiene el balance osmótico y el agar es el agente solidificante.

Características:

·         Medio de cultivo color ámbar claro.

·         En caso de ser suplementado con sangre ovina: color rojo cereza.

Almacenamiento:

·         Medio de cultivo listo para usar en frascos a 10-35 ºC.

·         Medio de cultivo preparado a 2-8 ºC.

Tipo de inhibidor:

-No tiene agentes inhibidores-

Resultados:

 Observar las características de las colonias. Para el medio de cultivo conteniendo sangre, observar las reacciones de hemólisis:

Hemólisis alfa: lisis parcial de los glóbulos rojos. Se observa un halo de color verdoso alrededor de la colonia en estudio. Es debido a la oxidación de la hemoglobina a metahemoglobina (compuesto de color verdoso) por el peróxido de hidrógeno generado por los microorganismos.

Hemólisis beta: lisis total de los glóbulos rojos. Se observa un halo claro, brillante alrededor de la colonia en estudio.

Hemólisis gamma: ausencia de lisis de los glóbulos rojos. El medio de cultivo no presenta modificaciones de color y aspecto alrededor de la colonia en estudio.

Bacteria que aísla:

-Ninguna-

Incubación:

En aerobiosis, a 35-37°C durante 24 horas.

MacConkey:

Categoría; selectivo/diferencial.

Uso:

 Este medio se utiliza para el aislamiento de bacilos Gram negativos de fácil desarrollo, aerobios y anaerobios facultativos. Permite diferenciar bacterias que utilizan o no, lactosa en muestras clínicas, de agua y alimentos. Todas las especies de la familia Entero bacteriaceae desarrollan en el mismo.

Fundamento:

En el medio de cultivo, las peptonas, aportan los nutrientes necesarios para el desarrollo bacteriano, la lactosa es el hidrato de carbono fermentable, y la mezcla de sales biliares y el cristal violeta son los agentes selectivos que inhiben el desarrollo de gran parte de la flora Gram positiva. 
Por fermentación de la lactosa, disminuye el pH alrededor de la colonia. Esto produce un viraje del color del indicador de pH (rojo neutro), la absorción en las colonias, y la precipitación de las sales biliares. 
Los microorganismos no fermentadores de lactosa producen colonias incoloras.

Características:

 Medio preparado: rojo púrpura

Inhibidor:

·         Cristal violeta.

·         Sales biliares.

Agente diferencial:

Lactosa.

Indicador:

Rojo neutro.

Almacenamiento:

·         Medio deshidratado: 10-35°C

·         Medio preparado: 2-8°C

Incubación:

Durante 18-48 horas, a 35-37 ºC, en atmósfera aeróbica

Resultados:

Microorganismos	Colonias
Escherichia coli ATCC 25922	Rojas con halo turbio
Klebsiella pneumoniae ATCC 700603	Rosadas mucosas
Salmonella typhimurium ATCC 14028	Incoloras, transparentes
Shigella flexneri ATCC 12022	Incoloras, transparentes
Proteus mirabilis ATCC 43071	Incoloras, transparentes
Enterococcus faecalis ATCC 29212	Diminutas, incoloras, opacas

VBB:

Categoría; selectivo/diferencial.

Uso:

Medio de enriquecimiento altamente selectivo para el aislamiento de Salmonella spp., excepto S. typhi y S. paratyphi, a partir de muestras clínicas, alimentos, y otros materiales de importancia sanitaria. No se recomienda para el aislamiento de Shigella spp.
Es de un valor excepcional cuando se investiga un gran número de muestras de heces o alimentos, por su alta capacidad de diferenciación de las colonias sospechosas.

Fundamento:

En el medio de cultivo, la pluripeptona y el extracto de levadura, constituyen la fuente de nitrógeno, vitaminas y minerales. La lactosa y la sacarosa son los hidratos de carbono fermentables, el rojo fenol es el indicador de pH, que vira al amarillo cuando hay producción de ácido a partir de la fermentación de azúcares, el cloruro de sodio mantiene el balance osmótico, y el verde brillante actúa como agente selectivo.

Características:

Medio preparado: verde.

Inhibidor:

Color verac brillante (inhibe gram positivas)

Incluye:

·         Lactosa.

·         Sacarosa.

Indicador:

Rojo fenol.

Incubación:

Incubar 24 horas a 35-37°C.

Almacenamiento:

·         Medio deshidratado: a 10-35 ºC.

·         Medio preparado: a 2-8 ºC.

Resultados:

Microorganismos	Características de las colonias
Escherichia coli ATCC 25922	Amarillo-verdosas sobre fondo amarillento
Salmonella enteritidis ATCC 13076	Rosas, blancas o transparentes sobre fondo rojo
Salmonella typhi	Crecimiento inhibido
Salmonella typhimurium ATCC 14028	Rosas, blancas o transparentes sobre fondo rojo
Shigella flexneri. ATCC 12022	Crecimiento inhibido
Staphylococcus aureus ATCC 25923	Crecimiento inhibido

                                    

Rickettsia

Rickettsia by Alexis Quiroz Frausto